Гепатит С - это название заболевания, поражающего крайне важнейший орган - печень. Вирус гепатита С относится к РНК-содержащим патогенам. Впервые данный микроорганизм был выявлен в конце 80-х годов двадцатого столетия.
Пути распространения заболевания можно разделить по группам:
Анализ на гепатит должны сдавать люди, которые:
ВГС анализ крови является лабораторным методом диагностики гепатита С, механизм его действия построен на идентификации антител типа Ig G и Ig M, которые начинают активно вырабатываться при появлении в крови антител вируса. Что это такое? Это патогенные микроорганизмы, появляющиеся спустя несколько недель или даже месяцев с момента инфицирования человека.
Расшифровка анализа
Изучая строение ВГС, ученые пришли к выводу, что данный возбудитель представляет собой геном, относящийся, как к животным, так и к растительным вирусам. Он состоит из одного гена, в который умещается информация о девяти белках. На первые возложена задача по проникновению вируса внутрь клетки, вторые отвечают за формирование вирусной частицы, а третьи в это время переключают естественные функции клетки на себя. Они относятся к структурной группе белков, когда остальные шесть - это неструктурные.
Геном ВГС - это одна РНК нить, заключенная в собственную капсулу (капсид), образованную нуклеокапсидным белком. Все это обволакивается оболочкой, состоящей из белков и липидов, она позволяет успешно связываться вирусу со здоровой клеткой.
Как только вирус попадает в кровь, он начинает циркулировать по всему организму через кровеносный поток. Попав в печень, геном активизирует свои функции и присоединяется к клеткам печени, постепенно проникая внутрь них. Гепатоциты (так называются эти клетки) претерпевают нарушений в ходе своего функционирования. Их основной задачей становится «работа на вирус», в процессе которой им необходимо синтезировать вирусные белки и рибонуклеиновую кислоту.
Чем дольше ВГС находится в печени, тем больше клеток органа поражается и гибнет, что грозит их перерождением в злокачественную опухоль.
ВГС различает в себе несколько генотипов, то есть штаммов. На данный момент известно 6 генотипов, при этом каждый этот вид имеет свои подвиды. Все они 
обозначаются в зависимости от нумерации от 1 до 6. Есть сведенья о локализации того или оного вируса в пределах земного шара. К примеру, 1, 2 и 3 генотип встречается в пределах всего мира, в то время как 4 - в большей степени на Среднем Востоке и Африке, 5 - в Южной Африке, а 6 - на Юго-Восточной Азии.
Основанием для назначения лечения должен быть положительный результат анализа крови на ВГС, а также определенный генотип.
Расшифровка ВГС анализа:
- Анти-ВГС Ig M - маркер активной репликации вируса гепатита С;
- Анти-ВГС Ig G - вероятное присутствие вируса гепатита С;
- Ag ВГС - положительный результат, свидетельствующий о наличии вируса гепатита С;
- РНК ВГС - вирус гепатита С присутствует в организме и активно прогрессирует.
Ложноположительный результат
На медицинской практике хоть и редко, но встречались случаи ложноположительного результата ВГС анализа. Такое возможно в ситуации с беременными и с людьми, у которых имеются какие-то другие инфекционные заболевания.
С еще меньшей вероятностью можно говорить о ложноотрицательных результатах, которые регистрируются у пациентов, принимающих иммунодепрессанты, либо на это повлияли особенности их иммунной системы. Тот же результат ожидается, если гепатит С находится на начальной стадии развития.
При возникновении недоразумений Вы можете прибегнуть к ПЦР тесту гепатита С, если он даст положительный результат, то сдайте еще анализ для определения вирусного генотипа.
Срок действия и как сдавать
Анализ на гепатит С подразумевает под собой забор крови у пациента натощак, учитывая, что поужинать он должен не позднее, чем за 8 часов до сдачи материала. После пробуждения можно выпить лишь немного простой негазированной воды. Будет лучше, если накануне исследования Вы проследите за своим питанием, сделав его максимально легким и простым. Жареные и жирные продукты полностью должны быть исключены, так же как и алкоголь. Тяжелый физический труд и спорт может повлиять на достоверность результатов теста, поэтому постарайтесь избежать этого.
Если Вы собираетесь сдавать кровь на анализ для выявления гепатита С, то Вам должны сказать о том, что лекарственные препараты могут исказить реальные значения, поэтому проводите исследование либо до начала приема лекарств, либо уже спустя пару недель после их отмены. Если остановить медикаментозное лечение невозможно по показаниям врача, то предупредите об этом медсестру, принимающую анализ. Она должна отметить у себя название принимаемого лекарственного средства и дозировку, в которой Вам его прописали.
Для лабораторного исследования требуется сыворотка крови. Сколько действительны материалы? Они могут храниться менее пяти дней при температурном режиме от 2-х до 8-ми градусов по Цельсию, и более пяти дней при условии, что температура хранения будет -20 градусов по Цельсию.
ВГС анализ крови делается в обязательном порядке для людей с иммунодефицитными состояниями, в особенности с ВИЧ.
Иммуноферментный анализ на гепатит
Иммуноферментный анализ на гепатит назначается для точной диагностики инфекционного заболевания, определения конкретного штамма вируса, а также выбора метода лечения.
Данное исследование показывает:
- болен ли пациент гепатитом,
- как давно произошло заражение,
- тип вируса, носителем которого является человек.
Всем пациентам, у которых подозревается данное заболевание, рекомендуется также сдать на билирубин. Это позволит оценить степень поражения печени, косвенно укажет на стадию заболевания (острая или хроническая).
Исследования крови на гепатит проводятся в два этапа. В первую очередь методом ПЦР определяется наличие возбудителей. После этого проводятся иммуноферментные на поиск специфических маркеров конкретного вида вируса, их количества. Иногда тесты назначаются для оценки эффективности вакцинации или назначенного лечения. В таком случае ПЦР не проводится, исследуют только сыворотку крови на содержание и концентрацию антител.
Подготовка к иммуноферментному анализу
Для определения маркеров гепатита исследуется сыворотка крови. Правила подготовки — такие же, как при биохимическом тесте. Если анализ назначен для оценки эффективности лечения, необходимо сдать кровь до первого утреннего приема препаратов. При длительном приеме иных медикаментов необходимо сообщить об этому специалисту до проведения теста.
Ложноположительные результаты анализов бывают у лиц:
- с хроническими заболеваниями кровеносной системы,
- зараженных иными инфекциями,
- с ОРВИ или гриппом в острой форме,
- c нарушениями метаболизма,
- c гормональными или аутоимунными патологиями,
- вынашивающих ребенка,
- со злокачественными опухолями.
Положительная реакция иммуноферментного анализа у таких пациентов требует повторного исследования. Только по результатам нескольких тестов можно назначитьлечение.
Специфическая лабораторная диагностика вирусных гепатитов основывается на применении иммунохимических и молекулярно-биологических методов исследований. Основными иммунохимическими методами являются радиоизотопный или радиоиммунный (РИА) и иммуноферментный (ИФА). В основе иммунохимических методов диагностики лежит специфическое взаимодействие антиген - антитело с последующим выявлением комплекса при помощи специальных меток. Наиболее распространенным является иммуноферментный анализ.
Первые сообщения о применении иммуноферментного анализа , как метода для определения каких-либо веществ были опубликованы в 1971 году одновременно двумя исследовательскими группами - В. Van Weemen, A. Schuurs и Е. Engvall, P. Perlmann. В основе иммуноферментного анализа лежит следующий принцип: на твердой фазе, в качестве которой используется, главным образом, поверхность лунок полистиролового планшета, фиксируется антиген возбудителя инфекции или антитела (часто смесь антител) к антигенам, которые необходимо обнаружить. Этот антиген или антитела, которые зафиксированы на твердой фазе, называются иммуносорбентом.
В результате инкубации иммуносорбента и испытуемой сыворотки при наличии определяемого агента происходит их связывание в комплекс антиген - антитело. После процедуры промывки, в ходе которой удаляются несвязанные антигены и антитела, проводится инкубация с конъюгатом. В качестве конъюгата при детекции HBsAg используют анти-HBs, при детекции антител к вирусу гепатита С -антитела к иммуноглобулинам человека (антивидовой конъюгат), меченные пероксидазой хрена. В итоге этой инкубации происходит присоединение к уже имеющимся комплексам антиген - антитело дополнительно внесенного конъюгата. После удаления несвязавшегося конъюгата (отмывки) в лунки вносится субстрат. При использовании пероксидазного конъюгата в качестве субстрата используют перекись водорода в сочетании с индикатором, в качестве которого наиболее часто применяют ортофенилендиамин (ОФД) или тетраметилбензидин (ТМБ). Результат оценивается фотометрически.
Качество и надежность аналитических возможностей иммуноферментного метода характеризуются рядом критериев, к числу которых относятся чувствительность, специфичность, правильность и воспроизводимость.
Чувствительность - то минимальное количество вещества, которое может быть обнаружено при помощи иммуноферментного анализа. При этом нижним пределом чувствительности данного метода является концентрация исследуемого вещества в образце, которая соответствует наименьшему положительному результату определения, статистически достоверно отличающемуся от показателей заведомо отрицательных образцов. Чувствительность ИФТС зависит от ряда обстоятельств, связанных как с конструкцией тест-системы (аффинность иммуносорбента, качества экстракционных и буферных систем), так и разрешающей способностью и точностью метода регистрации.
Специфичность - способность выявлять именно те компоненты, для определения которых предназначена данная иммуноферментная тест-система. Специфичность определяется во многом перекрестной реакцией антител или антигенов (то есть композиции, используемой в качестве иммуносорбента), с близкородственными соединениями, а также составом инкубационной среды (матрикс-эффект).
Правильность - соответствие среднего значения результатов повторных определений одного и того же контрольного образца с истинной величиной измеряемого параметра. Правильность определения в ИФА зависит от качества самой тест-системы и контрольного образца. Для хороших иммуноферментных тест-систем показатели правильности лежат в пределах 90-110 %. Особенностью медико-биологических исследований в ИФА является невозможность установления точной величины, и поэтому за истинную величину принимается средняя от нескольких экспертных лабораторий. Статистическим критерием правильности служит средняя арифметическая и степень ее отклонения от истинного значения, выраженная в процентах.
Воспроизводимость - способность тест-системы показывать одни и те же значения при повторных исследованиях одного и того же образца. Воспроизводимость зависит как от случайных погрешностей (ошибок) при проведении процедуры постановки реакции, так и от качества тест-систем и точности метода регистрации результатов. Считается, что воспроизводимость одних и тех же контрольных образцов одной фирмы в разных лабораториях не должна превышать величину коэффициента вариации в 15%.
Существует несколько специфических схем ИФА для определения маркеров вирусных гепатитов: а) прямой иммуноферментный анализ; б) непрямой иммуноферментный анализ; в) конкурентное ингибирование; в) «ловушеч-ный», или «capture» метод.
Из молекулярно-биологических методов диагностики вирусных гепатитов чаще используются полимеразная цепная реакция и гибридизация. Эти методы, особенно ПЦР, позволяют выявлять очень малые количества специфической вирусной ДНК или РНК и, таким образом, судить о репликации, а в ряде случаев и об активности репликации.
Гепатиты выделяют в отдельную группу воспалительных заболеваний печени. Они могут иметь разную этиологию и форму. При первых подозрениях на такие заболевания врач назначает соответствующие анализы. Но так как патологии рознятся своей природой, то и методы обнаружения вируса тоже отличаются.
Чаще всего фиксируются вирусы гепатитов А, В, С, D, E, F, G, которые вызваны количественным вирусным инфицированием. Помимо этого, показатели заболевания могут наблюдаться при желтой лихорадке, паротите, болезни Эпштейна - Барра, герпесе, краснухе, цитомегаловирусах, лихорадке Ласса, СПИДе.
Бактериальные причины развития патологий наблюдаются при наличии сифилиса, лептоспирозе, токсические – при алкоголизме, лекарственной, химической интоксикации. Также существуют гепатиты, вызванные лучевой болезнью и аутоиммунными патологиями. Каждый из этих видов патологии требует индивидуального подхода в лечении.
Поэтому при наличии у больного клинических симптомов заболевания назначается исследование крови на маркеры различных типов заболеваний.
Чтобы точно установить вид гепатита (вирусный, невирусный, острый, хронический или диффузный), больным следует сдать кровь на антитела. Но такая процедура в обязательном порядке требует предварительной качественнойподготовки.
Поэтому прежде чем делать анализ, следует учитывать такие пункты:
- Сдачу крови надо проводить натощак, так как на протяжении дня ее характеристики значительно отличаются.
- Последнее употребление пищи должно быть минимум за восемь часов до анализа. Не позволяется пить кофе, сок, чай и другие подобные напитки, разрешается только питьевая вода.
- В течение двух дней перед исследованием нельзя есть жирные и жареные продукты, пить алкоголь.
- Несколько часов перед процедурой запрещается курить.
- не сдается после рентгена, ультразвука, массажа, физиотерапии.
- За сутки до процедуры полностью прекращается употребление лекарств, снижаются физические и эмоциональные нагрузки.
- Если невозможно отменить лекарственные препараты, перечень этих средств должен быть указан отдельно еще до проведения анализа.
Периоды, когда необходимо сдавать кровь на подтверждение вида гепатита, разнятся. Так, выявить маркеры вируса группы А можно еще при первых симптомах патологии, так как максимально количественная концентрация антител к нему наблюдается на протяжении тридцати дней.
Вирус гепатита С определяется не раньше, нежели через полтора месяца после предполагаемого заражения.
Кровь на вирус можно сдать как в больнице, так и вызвать врача на дом. В любом случае, в процессе процедуры медик должен придерживаться необходимых стерильных мер, то есть использовать одноразовые материалы и инструменты.
Последовательность сдачи крови на анализ:
- Рука в районе предплечья перевязывается медицинским жгутом. Из-за этого движение крови в сосуде приостанавливается, участок вены в районе локтя становится выпуклым. В это место медик и будет вводить иглу.
- Район локтевого сгиба, наполненный кровью, хорошо дезинфицируется, смоченной в спирте ваткой.
- К шприцу подсоединяется игла и вводится в вену. Сразу после этого жгут снимается.
- После того как отобрано необходимое количество жидкости, иглу убирают из сосуда, а к ранке прикладывают ватку, смоченную в спирте. Чтобы быстро остановить кровь и не допустить образования гематомы, его сильно прижимают, затем руку сгибают и прислоняют к туловищу.
Нормальные показатели и расшифровка
Для определения вируса гепатита А применяется имуннохемилюминисцентный способ установления маркеров lg G вируса. Норма - показатель меньше 1 S/CO. Если результаты выше, это может говорить о присутствии вируса либо ранее перенесенном заболевании.
Маркер гепатита В определяется наличием антител Lg M. Любое их количественное значение является основанием для подтверждения диагноза гепатита В.
Вирус гепатита С диагностируется методом ИФА. В норме анти HCV-антитела должны отсутствовать. В случае их обнаружения, необходима повторная сдача анализа. Если и дополнительные исследования дали позитивный результат, вирус гепатита С подтверждается.
Маркеры гепатитов D-G тоже устанавливаются посредством иммуноферментного анализа. В случае присутствия антител к вирусам и их рекомбинантам, диагноз подтверждается после двух положительных проб.
Определение токсических, аутоиммунных, лучевых, то есть невирусных гепатитов несколько отличается.
В таких случаях используются косвенные методы подтверждения диагноза:
- Анализ на фибриноген. Норма этого белка находится в пределах 1,8 - 3,5 г/л. Пониженное число говорит о гепатите и повреждении тканей печени.
- Анализы на АСТ и АЛТ. Норма для АСТ от 0 до 75 Ед/л, для АЛТ от о до 50-ти Ед/л. Количественное повышение показателей указывает на наличие заболевания.
- Анализ на билирубин. Норма в пределах 5- 21 мкмоль/л. Большее число говорит о развитии патологии.
- Общий белок сыворотки. Норма взрослых 66 - 83 г/л., если числовое значение ниже - это свидетельствует об уменьшении альбумина, то есть о наличии заболевания.
Для подтверждения аутоиммунного гепатита проводятся микроскопические изучения биоптата печени. Такой анализ позволяет выявить количественные специфические поражения органа. Для этого при помощи специальной иглы берется фрагмент ткани печени. Затем материал подвергается обработке особыми реагентами и изучению под микроскопом. Также аутоиммунный гепатит подтверждается, если расшифровка анализа говорит, что уровень гамма глобулина G выше в 1,5 раза и когда антигладкомышечные, антиядерные, антимитохондриальные антитела в высоком титре имеют соотношение более чем 1:80.
Помимо этого, при таком диагнозе у больного присутствуют признаки воспаления тканей печении и ее недостаточность.
Все тонкости расшифровки анализа может знать только опытный специалист, так как, например, отдельное количественное увеличение общего белка необязательно является подтверждением болезни печени, а понижение альбумина может говорить о патологии почек.
Дополнительные анализы
Одно только исследование крови не всегда позволяет правильно установить диагноз и выяснить точную причину болезни. В некоторых вариантах делается бромсульфалеиновая проба. Это исследование позволяет проанализировать работу печени.
Бромсульфалеин вводится в кровь, из нее попадает в печень, затем в желчь и выводится естественным путем. Помимо этого, при подозрении на патологию может быть назначено ультразвуковое обследование печени. Это позволит определить размер органа (увеличен или нет), неоднородность его тканей (наличие фиброза, гипертрофии и др.), неточность контуров. Подобные изменения как раз и характерны для гепатитов.
В нынешнее время, чтобы определить вирус, часто применяется такой метод молекулярной диагностики, как полимеразная цепная реакция (ПЦР). Его преимущество в высокой чувствительности, а значит, большой точности.
Этот анализ основан на неоднократном копировании определенной части ДНК или РНК посредством ферментного воздействия. В результате образуются задвоенные отрезки генетической цепочки, благодаря которым можно выявить даже незначительное количество возбудителя.
ПЦР-исследования позволяют, определить вирус и поставить точный диагноз уже через несколько часов. Этот метод выявляет именно возбудителя, в то время, как другие анализы устанавливают лишь реакцию организма на вирус. Но у этого способа есть и свои недостатки. Все исследования должны проводиться только в стерильных условиях. Даже малейшее загрязнение способно повлиять на результаты.
Помимо этого, делать подобные тесты и расшифровку может только медик с большим опытом работы в сфере генетики.
Учитывая все вышеперечисленные факторы, нельзя сказать, что способ ПРЦ всегда точен. Он может показать неправильный результат как в положительную, так и в отрицательную сторону.
Для качественного лечения вирусных видов гепатита применяются иммуномодуляторы и противовирусные средства. Но так как эти препараты оказывают достаточно сильное воздействие на организм, прежде чем их приписать врач должен быть абсолютно уверен, что причиной патологии является именно вирусная инфекция. Поэтому могут быть назначены дополнительные анализы и исследования.
Страница 2 из 2
Сопоставление результатов молекулярной и ИФА-диагностики ХГС
В связи с недостаточной информативностью клинико-лабораторных тестов, при подозрении на ХГ использующихся на первом этапе обследования пациентов с ревматическими заболеваниями, особую актуальность приобретает вирусологическое исследование сыворотки крови с помощью иммуноферментного анализа и ПЦР.
Как указывают некоторые авторы при доступном иммуноферментном анализе возможны ложноположительные результаты, что чаще всего является следствием наличия в анализируемом образце антител к супероксиддисмутазе, совместно с которой в рекомбинантных дрожжевых клетках синтезируется с100-3, использующийся в качестве анигена в иммуноферментных тест-системах для идентификации ВГС . На результаты тестирования также влияют гипергаммаглобулинемия на фоне системных заболеваний соединительной ткани, недавние вакцинации (особенно к кори), криоглобулинемия, т. к. HCV может образовывать криопреципитат . Сообщалось о ложноположительных результатах после повторного размораживания образцов или после их длительного хранения при нестабильной температуре. Антитела к HCV образуются в среднем за 8 - 20 недель с момента инфицирования или через 15 недель от начала гепатита, у некоторых больных для образования антител требуется около года. Отсутствие антител к HCV не исключает диагноз HCV. Кроме того, 20% больных хроническим HCV могут быть серонегативными, так как содержат низкие титры анти-HCV антител на фоне иммунодефицита или иммуносупрессивной терапии .
ПЦР ткани печени в парафиновых срезах проведена нами в 44 случаях, из них в 23 (52,3%) зафиксирован отрицательный результат, в 20 (45,5%) - положительный, в одном случае (2,3%) зафиксирован отрицательный результат ПЦР в ткани при положительном ПЦР в крови пациента, что нами было интерпретировано как ранний период вирусного гепатита С на фоне РА.
Из 136 исследований ПЦР крови тест был положительным у 74 пациентов (54,4%), отрицательным в 62 (45,6%) случаях. В трех случаях (2,2%) положительный ПЦР-тест крови у больных РА сочетался с отрицательными данными ИФА, что было расценено как ложноотрицательные результаты иммуноферментного анализа. Два (0,6 %) отрицательных ПЦР теста сопровождались положительным заключением по ИФА при реактивном артрите, что позволило интерпретировать результат как ложноположительный, таблица 3.
ИФА на вирус гепатита С проведено в исследованной группе у 332 пациентов. Тест был положительным в 176 случаях (53%) и отрицательным в 139 (41,9%), в 17 случаях результаты теста были сомнительными (5,1 %), таблица 2.
Таблица 2 - Частота получения ложноположительных и ложноотрицательных заключений на вирус гепатита С методом ИФА при различных заболеваниях
Нозология
Ложноположительные
Нозология
Ложноотрицательные
активности
Как видно из таблицы 2 наибольшее число ложноположительных заключений (0,9%) по ИФА-диагностике получено в группе пациентов с СКВ С и РА С, что, на наш взгляд, связано с наличием большого числа циркулирующих иммунных комплексов и несовершенством методики ИФА 1 и 2 поколений для пациентов с аутоиммунной патологией.
Полученные данные свидетельствуют, что при постановке диагноза ХГС на фоне ревматических заболеваний нельзя ориентироваться на результаты одного теста. Все это послужило предпосылкой к сопоставлению результатов различных способов лабораторной диагностики вируса гепатита С.
Нами было отобрано 33 больных, у которых не было однозначной трактовки и направленности в заключениях по наличию вируса гепатита С при ИФА, ПЦР и иммуногистохимической диагностике (таблица 3).
Адаптированной методикой ПЦР в тканях проведено исследование биопсийного в случаях, когда лабораторная и серологическая диагностика ХГС не позволяла достоверно судить о наличии вируса гепатита С и клинический диагноз не мог быть окончательно установлен.
В целом, изменение окончательного диагноза с учетом результатов молекулярной диагностики биоптата осуществлено у 15 больных из 169 пропунктированных пациентов, что составляет 8,9 %.
Таблица 3 - Соотношение спорных результатов тестирования на ВГС
Особенно настораживает гипердиагностика ХГС с использованием ИФА тест-систем, в данном случае мы имеем дело либо с самой ранней стадией ХГС и его внепеченочной пролиферацией, либо с чистой гипердиагностикой данного заболевания. Имеющиеся различия в заключениях обусловлены тем, что ПЦР не требуют осаждения иммунных комплексов, как при ИФА-тестах, следовательно ложноположительных реакций практически нет. Как отмечено некоторыми авторами из 100 больных с РНК HCV антитела класса Ig M к HCV были обнаружены в 66 % случаев, в то же время из 171 сыворотки с отрицательными ПЦР-данными антитела класса Ig M к HCV были обнаружены в 45 случаях, что свидетельствует либо о ложноположительных результатах, либо о колеблющейся виремии, либо о внепеченочной репликации вируса . В нашем исследовании у 4-х больных (2 - СКВ С, 1 - РА С, 1 - ХГС) были положительны тесты исследования на РНК - ВГС в крови, но отрицательные в ткани печени, что также может быть подтверждением внепеченочной репликации вируса, либо ранней фазой течения ХГС.
Чувствительность и специфичность тестов детекции ВГС в крови и тканях, представлены в таблице 4, из которой следует, что методы молекулярной диагностики высокочувствительны и специфичны.
Таблица 4 - Чувствительность и специфичность тестов детекции ВГС в крови и тканях
Чувствительность (%)
Специфичность (%)
ПЦР в крови
ПЦР в ткани
Иммуногистохимия
Учитывая большое число различных аутоантител, методы молекулярной диагностики вирусных гепатитов по анализам крови более оправданы, чем иммуноферментный анализ у лиц с СЗСТ а верификация неструктурных белков ВГС в тканях возможна только с использованием методов молекулярных диагностики (ПЦР в ткани и иммуногистохимии).
Заключение
Очаговая деструкция хрящевой и костной ткани - ведущий механизм повреждения суставов при РА. В поддержании воспалительных изменений, протекающих при ревматических заболеваниях, значительная роль принадлежит нейтрофилам и лимфоцитам. Показано, что наличие неспецифической реактивности нейтрофилов отражает их патогенетическую значимость и избирательную устойчивость к ВГС. Клиническая картина ХГС в целом ряде наблюдений характеризуется не только поражением печеночной ткани, но и различными внепеченочными проявлениями, которые могут быть обусловлены иммунокомплексными механизмами. Более полному пониманию патогенеза системных проявлений при хронической вирусной инфекции будет способствовать установление факта внепеченочной репликации вирусов гепатита, что подтверждено обнаружением антигенов ВГС в лимфоцитах при использовании высокоспецифичных методов ПЦР и иммуногистохимии.
Методами молекулярной диагностики установлена тропность ВГС помимо печеночной к почечной ткани, причем оба органа поражаются одновременно. Неструктурные белки ВГС обнаружены также в ткани легкого (бронхиальном эпителии), лимфоцитах периферической крови и портальных трактов, эпителии билиарных протоков. В клинически неоднозначных ситуациях с высоким уровнем гепатоспецифических ферментов показано морфологическое исследование печеночного биоптата для верификации ВГС в тканях. Иммуногистохимическое исследование биоптата при криптогенном гепатите позволиляет диагностировать вирусное поражение печени, в том числе ХГС, протекающего без наличия РНК - ВГС в крови. С другой стороны ПБП позволяет исключить диагноз ХГС. В группе больных СЗСТ метод ИФА приемлем в основном для скрининга обследуемых на наличие ВГС и предпочтение следует отдавать методам молекулярной диагностики.
Литература
1. Ивашкин, В. Т. Болезни суставов. Пропедевтика, дифференциальный диагноз, лечение / В. Т. Ивашкин, В. К. Султанов. М.: Литтерра, 2005. 544 с.
2. Serum HCV RNA levels correlate with histological liver damage and concur with steatosis in progression of chronic hepatitis C / L. Adinolfi // Dig. Dis. Sci. 2001. Vol. 46. № 8. P. 1677-1683.
3. Disappearance of serum HCV-RNA after short-term prednisolone therapy in a patient with chronic hepatitis C associated with autoimmune hepatitis-like serological manifestations / M. Yoshikawa // J. Gastroenterol. 1999. Vol. 34. № 2. P. 269-274.
4. False-positive anti-HCV tests in rheumatoid arthritis / L. Theilmann // Lancet. 1990. Vol. 335. № 8701. P. 1346.
5. Amarapurkar, D. Role of autoimmunity in nonviral chronic liver disease / D. Amarapurkar, A. Amarapurkar // J. Assoc. Physicians India. 2000. Vol. 48. № 11. P. 1064-1069.
6. Boyer, N. Patogenesis, diagnosis and management of hepatitis C / N. Boyer, P.Marcellin // J. Hepatol. 2000. Vol. 32. №.2. suppl. P. 98-112.
7. Andreas, C. Chisari Pathogenesis of Chronic Hepatitis C: Immunological Features of Hepatic Injury and Viral Persistence / C. Andreas, V. Francis // Hepatology. 1999. Vol. 30. № 3. P. 595-601.
